Микориза для голубики какой тип грибов

Первый профессиональный магазин на рынке растений

В корзине пусто!

ВНИМАНИЕ АКЦИЯ c 1.12.2018 до 1.02.2019. Всем Подписчикам нашего канала на YouTube Сад без проблем либо чата Viber или Telegram СКИДКА на все 15%!

Микориза
Споры грибов эрикоидной микоризы.

Споры грибов эрикоидной микоризы

100 мл — 125,00 грн

В состав грибного инокулянта входят: основа — мелкозернистый торф (фракция 1 мм), споры гриба Pezizella ericao ( не менее 3-х штаммов гриба)

В 100 мл содержится не менее 9500 кол.

Гриб Pezizella ericao образует микоризу с растениями семейства вересковых: голубика, черника, клюква, брусника, рододендрон, вереск, кальмия, эрика и др. Внесение различных штаммов этого гриба в район корней, создает конкуренцию между расами грибов за углеводы, получаемые от растения-хозяина. Таким образом в целом увеличивается эффективность работы микоризы.

Эрикоидная микориза активно используется при промышленном выращивании голубики, клюквы, брусники для получения максимальных урожаев.

1. При посадке (пересадке) в район корней 10 — 15 мл продукта.

2. Вокруг растущего растения делаем 3-4 углубления по-ближе к корням. В каждое углубление вносим 2-5 мл продукта. Закрываем углубление.

Пример: на 2-х летний саженец голубики расход не более 10-15 мл.

Специальное предложение: стоимость 1 литра продукта — 950,00 грн.

Симбиоз корней и грибов

Курлович, Т. В. Готовим участок под голубику / Т. В. Курлович // Наше сельское хозяйство, 2016.- № 3. — с.55-61.

Проблема заключается в том, что у голубики, как и у других представителей семейства Вересковые, на корнях нет корневых волосков. Их функцию выполняет мицелий гриба, с которым корни растения находятся в симбиозе, так называемая микориза. Для голубики характерен эндотрофный (эрикоидный) тип микоризы, который отличает рыхлый мицелий гриба с внедряющимися в клетки корня гифами и образующими там клубочки. Данный тип симбиотических отношений причисляют к категории взаимовыгодных, поэтому раздельное существование партнеров невозможно. Растение снабжает микоризные грибы органическими питательными веществами, в частности, углеводами и энзимами. Грибы разлагают содержащееся в почве органическое вещество, извлекая из него минеральные соли (усваиваемый азот, фосфор, микроэлементы) и воду. Растворенные в воде питательные вещества поступают в гриб, а через него – в растение посредством переваривания клетками-фагоцитами отмерших клубков гиф гриба. К тому же за счет присоединения грибного мицелия к корням растения увеличивается объем почвы, охватываемый всасывающей поверхностью корней.

Эрикоидная микориза расширяет адаптационные способности растений голубики, благодаря чему культура может расти и плодоносить на относительно бедных почвах. Кроме того, микоризные грибы предохраняют корни растения от множества патогенных микроорганизмов, вызывающих болезни. Именно поэтому растения голубики гибнут или поражаются корневым раком, когда в почву вносят высокие дозы минеральных удобрений, из-за чего резко меняется соотношение разных групп микроорганизмов в почве. Снижается число микоризообразующих грибов – антагонистов фитопаразитов, и, соответственно, увеличивается количество фитопатогенных видов. Вероятно, это также является причиной непригодности для культивирования голубики земель, длительное время использовавшихся для возделывания традиционных сельскохозяйственных культур, при выращивании которых широко применяются минеральные удобрения и пестициды, способствующие нарушению естественной микрофлоры почвы. Это же объясняет и тот факт, почему голубика хорошо растет и развивается на девственных, лесных почвах.

Развитие микоризообразущих грибов во многом зависит от эдафических условий, а именно от содержания гумуса и водно-воздушного режима почвы. Микоризообразование на почвах, богатых гумусом, проходит быстрее, чем на слабогумусированных. В засушливые периоды из-за дефицита почвенной влаги развитие микоризы затрудняется. Такая же картина из-за недостатка кислорода наблюдается на переувлажненных и тяжелых по гранулометрическому составу почвах. Смешивание минеральной почвы с органогенными субстратами (торф, опилки и др.) способствует большему распространению корней в глубину, а мульчирование посадок – равномерному распределению корней в верхнем слое почвы (со временем корни формируются и в мульче).

Сравнительный анализ среды обитания голубики и микоризообразующих грибов показывает, что их экологические требования идентичны. Поскольку первыми в трофической цепи идут микоризные грибы, то они и определяют требования голубики к условиям произрастания. В природе корни голубики растут в направлении условий, благоприятных для развития микоризы. Следовательно, для голубики необходимо подбирать почвы с ненарушенной микрофлорой, обладающие естественным плодородием, а все приемы агротехники должны быть направлены на создание условий, стимулирующих развитие микоризообразующих грибов, что, в конечном итоге, будет способствовать росту и развитию всего растения.

Благоприятные условия для развития микоризообразующих грибов: кислая среда – рН 3,5–4,5 (до 5) единиц в водном растворе, обеспеченность почвы воздухом и водой, температура в пределах 18–20 °C. Следовательно, для закладки посадок голубики нужно подбирать участки с кислой, гумусированной, умеренно-влажной и хорошо аэрируемой почвой.

Анализ изменчивости показателей роста и развития растений сортовой голубики высокорослой, инокулированных микоризообразующими грибами в условиях ex vitrо Текст научной статьи по специальности «Сельское хозяйство, лесное хозяйство, рыбное хозяйство»

МИКРОКЛОНАЛЬНОЕ РАЗМНОЖЕНИЕ / МИКОРИЗА / МИКОРИЗООБРАЗУЮЩИЕ ГРИБЫ / ИНОКУЛЯЦИЯ / ЕX VITRO / АДАПТАЦИЯ / MICROCLONAL REPRODUCTION / MYCORRHIZA / MYCORRHIZA-FORMING FUNGI / INOCULATION / EX VITRO / ADAPTATION

Аннотация научной статьи по сельскому хозяйству, лесному хозяйству, рыбному хозяйству, автор научной работы — Камельчук Я.С., Волотович А.А.

При размножении in vitro этап акклиматизации считается критическим и происходит массовая гибель растений, в связи с чем применение микоризных грибов при микроклональном размножении поможет повысить выживаемость растений в условиях ex vitro и является перспективным методом при адаптации растений. В статье представлены исследования по изучению видового состава микоризных грибов у голубики высокорослой и черники обыкновенной и применение их на этапе адаптации растений.

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.

ANALYSIS OF VARIABILITY OF GROWTH INDICATORS AND DEVELOPMENT OF VARIETY BLUEBERRY PLANTS HIGHLY INOCULATED BY MICROIZING FUNGULAR MUSHROOMS IN EX-VITRO CONDITIONS

At reproduction in vitro, the acclimatization stage is considered critical and mass death of plants occurs, and therefore the use of mycorrhizal fungi in microclonal reproduction will help to increase the survival of plants in ex vitro conditions and is a promising method for plant adaptation . The article presents studies on the species composition of mycorrhizal fungi in blueberry and blueberry and their application in the stage of plant adaptation .

Текст научной работы на тему «Анализ изменчивости показателей роста и развития растений сортовой голубики высокорослой, инокулированных микоризообразующими грибами в условиях ex vitrо»

аспирант кафедры биотехнологии, Полесский государственный университет, г. Пинск, Республика Беларусь

А.А. ВОЛОТОВИЧ, канд. биол. наук

Республиканский лесной селекционно-семеноводческий центр, г. Минск, Республика Беларусь

Статья поступила 21 марта 2018г.

АНАЛИЗ ИЗМЕНЧИВОСТИ ПОКАЗАТЕЛЕЙ РОСТА И РАЗВИТИЯ РАСТЕНИЙ СОРТОВОЙ ГОЛУБИКИ ВЫСОКОРОСЛОЙ, ИНОКУЛИРОВАННЫХ МИКОРИЗООБРАЗУЮЩИМИ ГРИБАМИ В УСЛОВИЯХ EX VITRO

Ключевые слова: микроклональное размножение, микориза, микоризообразующие грибы, инокуляция, еx vitro, адаптация

Введение. Одно из направлений в биотехнологии связано с расширением исследований микоризных грибов, оказывающих стимулирующее действие на рост и развитие растений. Интерес к указанным грибам вызван тем, что растения in vitro демонстрируют ярко выраженный положительный ростовой ответ на колонизацию корней грибным мицелием. Улучшение роста растений сопровождается повышением устойчивости к стрессовым ситуациям и патогенам. Эти эффекты обусловлены активностью грибного мицелия, который поглощает минеральные элементы, особенно малоподвижные (Р, Cu, Zn), и переносит их в корни ассоциированного растения-хозяина, получая взамен органические формы углерода. Грибы микоризообразователи способствуют улучшению усвоения фосфорсодержащих соединений растениями, как правило, в зоне корнеобитаемо-го слоя почвы в условиях роста in vivo, оказывает влияние и химический состав почвы на распространенность и интенсивность микоризы. Подавляющее количество фосфора фиксируется почвой, превращаясь в труднодоступные для растений фосфаты. Валовые запасы фосфора в почвах довольно значительны, однако фосфор находится в них в нерастворимой, малодоступной для растений форме. Это объясняется тем, что дефицит фосфора в кислых почвах часто связан с токсичностью алюминия и марганца, особенно, если рН < 5,4. Ионы алюминия и железа, преобладающие в кислых почвах, взаимодействуют с фосфором, вследствие чего он становится недоступным для растений. Новый этап изучения микробиологической фосфатмобилизации наступил с установлением важной роли микоризных грибов в снабжении растений почвенным фосфором. Арбускуляр-ные грибы эффективны и необходимы растению в определенном диапазоне содержания фосфора. Низкое содержание этого элемента стимулирует развитие микоризы, приносящей выгоду растениям, и наоборот [8, 11, 18, 19].

Для представителей семейства Ericaceae характерно формирование эрикоидной и арбутоидной микоризы, которые свойственны сравнительно небольшому числу видов — 1,8% изученных микоризных растений [5].

В условиях промышленной эксплуатации бывшего торфяного месторождения при создании ягодных плантаций голубики высокорослой на территории Белорусского Полесья инфицирование растений выглядит проблематичным, т.к. при добыче торфа сняты верхние слои, для которых свойственно высокое разнообразие микроорганизмов, в том числе и спор микоризообразующих грибов [3]. Привнос микрофлоры возможен аэрогенным путем или при посадке растений вместе с

грунтом (при использовании контейнеров с закрытой корневой системой). Наличие видов, способных инфицировать ягодные растения, особенно интродуцированные виды, в этих условиях представляется маловероятным. Микроклональное размножение растений in vitro предполагает полную стерилизацию и размножение стерильных регенерантов. На этапе адаптации укорененных регенерантов к условиям роста ex vitro необходимо возвращать микоризообразователи путем инокуляции, используя в дальнейшем микоризные подкормки на этапе формирования зрелого растения.

В связи с вышеизложенным перспективно направление по разработке и подбору эффективных индукторов микоризообразования при возделывании голубики высокорослой. Оно рассматривается как важнейшая область биотехнологии, в которой решается целенаправленная задача по регулированию процесса микоризообразования в растениях, что в конечном итоге способствует повышению их продуктивности и устойчивости.

Целью настоящего исследования является выявление видового (родового) состава микоризных грибов аборигенных растений черники и культурного сорта голубики, установление влияния искусственной микоризации выделенными грибами на этапе адаптации голубики высокорослой к условиям ex vitro.

Методика и объекты исследования. Исследования проводились в 2015-2016 г. на базе лаборатории прикладной фундаментальной биотехнологии, микробиологии ПолесГУ, а также научно-исследовательской лаборатории клеточных технологий в растениеводстве.

Объектами исследования являлись корни представителей семейства вересковых растений аборигенного вида — черники обыкновенной, культурного вида — голубики высокорослой сортов Reka, Denisa blue; микоризные грибы голубики, черники. Материалом для проведения исследований явились: корневые волоски черники обыкновенной; корневые волоски голубики высокорослой; ризосфера и ризоплана вышеназванных растений; растения-регенеранты голубики высокорослой сортов Reka, Denisa blue, выращенные в условиях in vitro.

Отбор образцов корней черники для исследования производили в естественных фитоценозах три раза в год — вначале периода вегетации; в период созревания семян; в конце периода вегетации. Корни голубики отбирали с экспериментально-опытного участка биотехнологического факультета ПолесГУ. При этом отбор образцов 20 растений каждого вида проводили по методике [4]. Важным условием получения достоверных результатов видового состава микоризообразую-щих грибов, является минимизация времени от момента изъятия корней из почвы до их анализа. Нами экспериментальная часть работы с образцами производилась в течение 24 часов после сбора.

После удаления с корней почвы при помощи пинцета и кисточки, их помещали в колбу со 100 мл стерильной воды. Колбу встряхивали на качалке в течение 10 мин., затем с помощью стерильного пинцета переносили в следующую колбу со стерильной водой и повторно встряхивали на качалке. Проводили 5-7 смывов с корней. Посев осуществляли на сусло-агар, среду Чапека, картофельно-глюкозный агар.

Для выявления видов эндофитных грибов, развивающихся во внутренних слоях корня, проводили многостадийную поверхностную стерилизацию отмытых от почвы корней различными веществами в следующей последовательности: мыльным раствором; дистиллированной водой; бытовым отбеливателем: погружали исследуемые объекты в бытовой отбеливатель (действующее вещество 2%-ный раствор гипохлорита натрия) с выдержкой в 5 и 10 минут; дистиллированной водой (4-5 раз, для удаления остатков отбеливателя); 70% спиртом: образцы погружали в 70% спирт (выдержка не более 3-4 сек); дистиллированной водой [7].

Для исследования состава микоризообразующих грибов отрезки корня измельчали стерильным лезвием на кусочки длиной 1-2 мм и раскладывали на различные питательные среды под лами-нар-боксом по методике [4]. Всего было разложено 800 фрагментов корней. Культивирование проводили при +23°С в течение 15 суток, начиная со 2-ых суток периодически просматривали, отмечали рост, под световым микроскопом отслеживали спороношение и выделяли микромицеты в чистые культуры на отдельные чашки Петри со средой, на которых данный микромицет дал первоначальный рост. Для предотвращения развития бактерий вносили пенициллин в количестве 100 мг/л.

Микробиологический анализ поверхности корней (ризопланы) проводили по методике Гузевой и Звягинцева [4]. Десорбцию микромицетов с почвенных частиц проводили на качалке в течение 10-15 мин. Для посева микроорганизмов готовили разведения полученной суспензии (1:100;

1:1000; 1:10 000). Из каждой пробирки 1 мл суспензии высевали в стерильные чашки Петри. Посев из каждой пробирки производили в 1-2 чашки (над пламенем горелки, под ламинар-боксом) на расплавленную, охлажденную до +40°С агаризованную питательную среду Чапека. Чашки Петри с посевами помещали в термостат для инкубации при температуре +25°С на 10 суток. Для выделения микроорганизмов, развивающихся на поверхности корней и тонком слое прилегающих к ней почвенных частиц, а также во внутренних тканях корня, использовали методику [9].

Для определения сопутствующей микоризе микробиоты (почвенных бактерий) чашки Петри с посевами помещали в термостат при температуре +25° С на 10 суток. Затем производили микро-скопирование и физиолого-биохимические тесты с целью определения родов почвенных бактерий. Определение производили при помощи определителя бактерий Берджи [12].

За культурой грибов наблюдали в течение нескольких недель с интервалом 2-3 дня. При описании культуральных признаков грибов отмечали скорость роста колоний, внешний вид и текстуру колонии, окраску колонии, субстратного и воздушного мицелия, диффузию пигмента в агар, окраску окружающей питательной среды. Отмечали складчатость колонии [9]. Для характеристики морфологических признаков, культуру грибов сначала просматривали на чашках Петри при малом увеличении микроскопа, а затем готовили микроскопический препарат методом «раздавленной» капли [6, 10]. Для коллекционных культур микоризных грибов использовали метод хранения под вазелиновым маслом в холодильнике [9].

Для приготовления грибного инокулюма, отобранные чашки Петри с образцами штаммов для инокуляции вскрывали под ламинаром. Из краевой зоны колонии, развившейся на агаризованной среде, с помощью стерильного скальпеля вырезали пробки размером 5х5 мм культуры гриба-микоризообразователя, и вносили эти пробки в количестве 4 штуки в плоскодонную колбу на 500 мл с жидкой средой Чапека, заполненной на 1/3 колбы. Культивирование спор грибов проводили на орбитальном шейкере при 70 оборотах, в темном месте, при температуре +20°С до размера шариков из спор 5-15 мм. Далее выращенные споры подвергали растиранию в ступе с 50 мл жидкой среды Чапека с целью их разбиения. Просматривали под микроскопом на наличие конидий и спор. Полученную суспензию разводили в 500 мл дистиллированной воды и использовали для замачивания регенерантов на сутки [15].

Для изучения выделенных микоризообразующих грибов на рост и развитие растений голубики высокорослой в условиях ex vitro, были отобраны 8 грибов, а также их смеси: 7-8 гриба, всех грибов с 1 по 8 и взяты для эксперимента 2 сорта голубики — Reka и Denisa blue. Растения, укорененные in vitro, отмывали от остатков питательной среды, вымачивали в приготовленном инокулюме из отобранных штаммов грибов, высаживали в кассеты, заполненные на 1/3 торфяным субстратом. Кассеты с адаптантами накрывали полиэтиленовой пленкой, создавая условия повышенной влажности, до тех пор, пока не появлялись новые молодые листочки. Растения ежедневно опрыскивали водопроводной водой. Освещение 3000 лк, температура +23°С, фотопериод — 16/8 ч. Условно отобранным видам грибов присвоили номера: № 1 — Mortirella sp., № 2 — Alternaria alternata, № 3 -Pachybasium hamatum, № 4 — Spicaria elegans, № 5 — Coremiopsis rosea, № 6 — Rhinocephalum, № 7 -Rhizophagus irregularis, № 8 — Oidiodendron, № 7 и № 8 — Rhizophagus irregularis и Oidiodendron, смеси всех грибов № 1 — 8 — Mortirella sp., Alternaria alternate, Pachybasium hamatum, Spicaria elegans, Coremiopsis rosea, Rhinocephalum, Rhizophagus irregularis, Oidiodendron.

Результаты и их обсуждение. После идентификации выросших в чистых культурах грибов приготовили микропрепараты из этих грибов, которые просматривали под микроскопом. Для последующего анализа по определителям, атласам микроскопических грибов [6,10,13,14,17] были использованы данные микроскопии препаратов из грибов. Определены эндофитные грибы, выделенные из семейства вересковых и присущие только голубике: Sporotrichum aureum, Penicillium glabrum, Pithomyces sp., Cylindrocarpon sp., Coremiopsis rosea, Monilia humicola, Rhizophagus irregularis, Mortierella sp., Oidiodendron, только чернике — Cylindrocladium sporarium, Pachybasium hamatum, Rhinocephalum, Phialophora cinerescens, Spicaria elegans, Fusarium sp., а также определены общие виды — Penicillium expansum, Penicillium sp., Penicillium rubrum, Penicillium janthinellum, Alternaria alternata. Наиболее часто встречаемые виды у голубики — Alternaria alternata, Penicillium rubrum, Penicillium glabrum, Penicillium expansum, редкий вид — Rhizophagus irregularis, а самым редким оказался род Oidiodendron. Для черники часто встречаемыми видами оказались Penicillium sp., Alternaria alternata, Penicillium janthinellum, редким оказался род Phialophora cinerescens.

При выделении микроорганизмов из ризосферы и ризопланы растений были обнаружены сле-

дующие сопутствующие микоризе вересковых бактерии родов Desulfitobacterium, Escherichia coli, Acetobacter, Bacillus, Methylobacterium, Azotobacter и дрожжи рода Hanseniaspora. По обнаруженным бактериям сделано заключение, что они участвуют в поглощении растением питательных веществ, стимуляции роста и защите растений от патогенов, а также фиксации азота.

Схема опыта по влиянию искусственной микоризации выделенными грибами микроклонов голубики высокой при адаптации к условиям ex vitm включала 11 вариантов в трех повторностях: 1 — контроль, 2 — использование штамма гриба № 1 микоризы, 3 — использование штамма гриба № 2 микоризы, 4 — использование штамма гриба № 3 микоризы, 5 — использование штамма гриба № 4 микоризы, 6 — использование штамма гриба № 5 микоризы, 7 — использование штамма гриба № 6 микоризы, 8 — использование штамма гриба № 7 микоризы, 9 — использование штамма гриба № 8 микоризы, 10 — использование смеси штамма грибов № 7 и № 8 микоризы, 11 — использование смеси штамма всех грибов (№ 1 — 8) микоризы.

Эксперимент длился 5 месяцев. В конце эксперимента проводили замеры опытных и контрольных растений по высоте, количеству листьев, длине и ширине листа, длине корней, а также определяли прирост биомассы и жизнеспособность растений. Общий математический анализ и дисперсионный анализ данных проводили по стандартным методам вариационной статистики [1], c использованием программы статистического анализа данных AB-Stat v.1.0 [2].

Результаты изменчивости анализируемых количественных признаков у растений сортов Denisa blue и Reka приведены в таблицах 1 и 2 соответственно. Общий анализ изменчивости признаков указывает на то, что у сортов Denisa blue и Reka по всем анализируемым признакам, кроме количества листьев и жизнеспособности, наблюдалось достоверное превышение показателей по вариантам опыта над контрольными значениями (таблица 1).

Анализ высоты растений сортов Denisa blue и Reka указывает на то, что характер изменчивости признака определяется присутствием в грунте одного вида штамма или их смеси. При замачивании регенерантов сорта Denisa blue в инокулюме штамма 1 высота растений достоверно увеличилась в 1,5 раза по сравнению с контролем, штамма 2 — в 1,7 раза, штамма 3 — 1,5 раза, штамма 4 -1,6 раза, штамма 5 — 1,2 раза, штамма 6 — 1,7 раза, штамма 7 — 1,6 раза, штамма 8 — в 1,5 раза, смеси штаммов 7 и 8 — в 1,8 раза, смеси всех штаммов 1-8 — в 2 раза. Следует отметить, что наиболее высокие показатели высоты растений сорта Denisa blue получены при сочетании всех штаммов (таблица 1).

Анализ высоты растений при замачивании регенерантов сорта Reka в инокулюме штамма 1, высота растений достоверно увеличилась в 2 раза по сравнению с контролем, штамма 2 — в 1,9 раза, штамма 3 — 1,8 раза, штамма 4 — 1,8 раза, штамма 5 — 1,6 раза, штамма 6 — 1,8 раза, штамма 7 -1,8 раза, штамма 8 — в 1,8 раза, смеси штаммов 7 и 8 — в 2,2 раза, смеси всех штаммов 1-8 — в 2,8 раза. Следует отметить, что наиболее высокое достоверное превышение высоты растений сорта Reka над показателями в контроле получено при сочетании всех штаммов (таблица 1).

По количеству листьев у растений сорта Denisa blue характер изменчивости признака при наличии штаммов 1,2,3,4,5,7,8, смеси штаммов 7-8 имеет несущественное превышение над контрольным показателем. В присутствии штамма 6 характер изменчивости признака достоверно увеличился в 1,2 раза, а при наличии смеси всех штаммов — достоверно увеличился в 1,2 раза по сравнению с контролем (таблица 1).

У растений сорта Reka в присутствии штаммов 1,3,5,6,7 наблюдали незначительное снижение количества листьев по сравнению с контролем. В присутствии штамма 2, 8 и смеси всех штаммов установлено достоверное увеличение признака в 1,3 и в 1,2 раза по сравнению с контролем (таблица 1).

Анализ длины листьев у сорта Denisa blue указывает на то, что характер изменчивости признака в присутствии штаммов 1, 3 достоверно увеличился в 1,8 раза, штамма 2 — в 1,9 раза, штамма 4,8 — в 1,7 раза, штамма 5 — в 1,5 раза, штамма 6 — в 2 раза по сравнению с контролем. Следует отметить, что наиболее высокие показатели длины листьев получены при сочетании всех штаммов и смеси 7-8 штаммов (таблица 1).

Анализ длины листьев у сорта Reka показывает, что в присутствии штаммов 1, 2 она достоверно увеличилась в 1,5 раза по сравнению с контролем, штамма 3 — в 1,3 раза, штамма 4 — в 1,6 раза, штамма 5 — в 1,4 раза, штамма 6, 7 — в 1,7 раза, штамма 8 — в 1,4 раза, смеси штаммов 7-8 — в 1,8 раза, смеси штаммов 1-8 — в 2,2 раза по сравнению с контролем. Следует отметить, что наиболее высокие показатели длины листьев получены при сочетании всех штаммов (таблица 1).

Таблица 1 — Изменчивость количественных признаков у растений ex vitro сортовой голубики высокорослой Vaccinium corymbosum L. в присутствии грибов микоризообразователей

Сорт Штамм ВР, мм КЛ, шт. ДЛ, мм ШЛ, мм ПБ, г ДК, мм ЖР, %

Denisa blue Контроль 70,4±2,2 11,7±0,6 11,3±0,5 6,3±0,3 0,0406±0,0046 27,2±2,5 81,3±2,9

1 105,3±3,9** 12,7±0,6 19,9±0,7** 11,5±0,6** 0,1511±0,0206 34,3±1,6 82,3±2,9

2 120,8±4,4** 13,0±0,7 21,3±1,2** 11,2±0,6** 0,2391±0,0278** 45,0±2,9** 81,0±1,0

3 105,8±8,8** 11,9±0,9 19,6±1,8** 10,7±0,9** 0,1733±0,0299** 37,5±4,3** 81,0±1,0

4 110,1±3,6** 12,9±0,7 18,2±1,0** 10,5±0,6** 0,1346±0,0153 37,1±3,8** 81,3±2,9

5 89,0±2,3** 12,5±0,6 17,3±0,9** 10,1±0,6** 0,0987±0,0069 29,3±2,2 72,0±1,0

6 119,7±4,1** 14,4±1,5** 21,9±1,1** 12,3±0,8** 0,1942±0,0214** 37,3±2,2** 77,0±0,0

7 111,2±3,6** 12,5±1,1 18,7±0,9** 10,0±0,5** 0,1639±0,0128** 36,1±1,6** 86,7±2,0

8 107,6±2,9** 13,1±0,9 19,5±1,1** 10,9±0,6** 0,1477±0,0121 31,7±2,5 81,0±4,2

Смесь 7 и 8 123,4±5,2** 12,0±0,7 24,0±1,1** 12,1±0,5** 0,2385±0,0379** 47,6±3,3** 84,3±1,3

Смесь 1-8 137,4±7,6** 14,2±0,7** 25,9±1,5** 14,4±0,8** 0,4333±0,0583** 54,9±4,1** 93,3±2,0**

НСР005 10,3 1,6 2,7 1,9 0,1166 8,9 5,8

HCPo,oi 13,6 2,1 3,6 2,5 0,1532 11,7 7,7

Reka Контроль 67,0±3,4 10,0±0,4 21,1±0,8 13,5±0,6 0,1680±0,0243 49,0±4,1 72,3±2,9

1 135,6±5,0** 9,3±0,7 30,7±1,4** 21,7±0,8** 0,5740±0,0472** 62,7±5,3** 76,7±2,0

2 126,3±6,6** 12,8±1,1** 30,7±1,9** 21,3±1,2** 0,6130±0,1069** 81,7±8,2** 74,3±4,7

3 118,3±4,8** 9,8±0,4 26,6±1,0** 17,93±0,9** 0,4522±0,0656** 67,0±4,1** 75,3±2,3

4 122,3±4,0** 10,1±0,7 34,0±1,7** 23,27±1,0** 0,6301±0,0865** 75,7±4,8** 72,3±2,3

5 105,1±3,6** 9,7±0,6 28,6±2,1** 19,13±1,9** 0,2426±0,0387 48,9±4,9 76,7±5,2

6 120,4±4,1** 9,3±0,7 35,7±1,8** 25,33±1,5** 0,6551±0,6705** 86,2±5,2** 73,3±2,0

7 121,8±7,4** 9,3±0,5 35,1±1,4** 23,53±1,3** 0,7894±0,1299** 78,1±5,3** 72,3±2,3

8 123,7±5,4** 12,2±1,3** 28,9±1,6** 20,67±1,2** 0,5547±0,0671** 89,4±6,7** 79,7±3,3*

Смесь 7 и 8 146,2±8,0** 10,1±0,5 38,2±1,7** 26,33±1,4** 0,9175±0,0909** 90,1±6,6** 75,3±3,9

Смесь 1-8 190,1±6,2** 11,7±0,8** 46,6±1,7** 32,00±1,2** 1,6678±0,1046** 124,2±6,0** 74,3±2,9

НСР005 10,3 1,6 2,7 1,9 0,1166 8,9 5,8

НСР001 13,6 2,1 3,6 2,5 0,1532 11,7 7,7

Примечание. Данные представлены как среднее арифметическое ± стандартная ошибка средней. Признаки: ВР — высота растения, мм; КЛ — количество листьев, шт; ДЛ — длина листа, мм; ШЛ — ширина листа, мм; ПБ — прирост биомассы, г; ДК — длина корней, мм; ЖР — жизнеспособность растений; 1-8 — номера штаммов грибов-микоризообразователей; контроль — отсутствие штаммов грибов-микоризообразователей. НСР0,05 — наименьшая существенная разница при Р

Таблица 2 — Двухфакторный дисперсионный анализ изменчивости количественных признаков у регенерантов ex vitro сортовой голубики высокорослой Vaccinium corymbosum L. в присутствии грибов микоризообразователей

ИВ df ВР КЛ ДЛ ШЛ ПБ ДК ЖР

СК ДВ,% СК дв,% СК дв,% СК ДВ,% СК ДВ,% СК ДВ,% СК ДВ,%

Общее 329 982,536 100 11,646 100 94,164 100 58,488 100 0,185 100 918,433 100 44,573 100

Фактор А 1 21136,000** 6,539 484,848** 12,654 13110,300** 42,319 10608000** 55,128 18,785** 30,836 128898,400** 42,658 843,879** 29,127

Фактор В 10 15974,710** 49,418 21,825* 5,696 771,609** 24,907 330,388** 17,170 1,825** 29,962 6131,203** 20,291 42,127 14,540

АхВ 10 1781,736** 5,512 13,022 3,399 119,090** 3,844 76,336** 3,967 0,696** 11,425 1698,616** 5,621 58,879* 20,322

Повтор-ности 14 187,434 0,812 7,711 2,817 36,535 1,651 20,081 1,461 0,101 2,325 274,185 1,270 1,682 0,116

Случайные отклонения 294 414,728 37,719 9,831 75,434 28,745 27,279 14,578 22,274 0,053 25,452 309,694 30,159 24,761 35,895

Примечание. ИВ — источник варьирования; df — число степеней свободы; СК — средний квадрат; ДВ — доля влияния фактора; фактор А — сорта голубики высокорослой (Denisa blue, Reka); фактор В — штаммы грибов-микоризообразователей (1-8, смеси 7-8 и 1-8, контроль)

Ширина листьев сорта Denisa blue в присутствии штамма 1, 2 достоверно увеличилась в 1,8 раза, штамма 3, 4, 8 — в 1,7 раза, штамма 5, 7 — в 1,6 раза, штамма 6 и смеси штаммов 7-8 — в 1,9 раза, смеси штаммов 1-8 достоверно увеличился в 2,3 раза по сравнению с контролем. Следует отметить, что наиболее высокие показатели ширины листьев получены при сочетании всех штаммов (таблица 1).

У сорта Reka характер изменчивости данного признака был аналогичным (таблица 1).

Во всех случаях у сорта Denisa blue наблюдалось достоверное превышение показателей прироста биомассы растений в присутствии любого из испытанных штаммов, а также их смесей в 2,4 -10,7 раз по сравнению с контролем. Это для штамма 1 — в 3,7 раза, штамма 2 — в 5,9 раз, штамма 3

— в 4,2 раза, штамма 4 — в 3,3 раза, штамма 5 — в 2,4 раза, штамма 6 — в 4,8 раза, штамма 7 — в 4 раза, штамма 8 — в 3,6 раза, смеси штаммов 7-8 — в 5,9 раз, смеси всех штаммов 1-8 — в 10,7 раз (таблица 1).

У сорта Reka также во всех случаях наблюдалось достоверное превышение показателей прироста биомассы растений в присутствии любого из опытных штаммов, а также их смесей в 1,5 — 9,9 раз по сравнению с контролем. Для штамма 1 — в 3,4 раза, штамма 2 — в 3,6 раз, штамма 3 — в 2,7 раза, штамма 4 — в 3,6 раза, штамма 5 — в 1,4 раза, штамма 6 — в 3,9 раза, штамма 7 — в 4,7 раза, штамма 8 — в 3,3 раза, смеси штаммов 7-8 — в 5,5 раз, смеси всех штаммов 1-8 — в 9,9 раз соответственно (таблица 1).

Отмечено, что самые достоверные высокие показатели по приросту биомассы наблюдались у сорта Denisa blue и Reka при сочетании всех штаммов — в 10,7 раз и в 9,9 раз соответственно (таблица 1).

Анализ длины корней у сорта Denisa blue указывает на то, что характер изменчивости признака в присутствии штаммов 1, 7 достоверно увеличился в 1,3 раза, штамма 2 — в 1,6 раза, штамма 3, 4, 6 — в 1,4 раза, штамма 5 — в 1,1 раз, штамма 8 — в 1,2 раза, смеси штаммов 7-8 — в 1,8 раза, смеси штаммов 1-8 — в 2 раза по сравнению с контролем. Следует отметить, что наиболее высокие показатели длины корней получены при сочетании всех штаммов и смеси 7-8 штаммов (таблица 1).

Анализ длины корней у сорта Reka показывает, что этот показатель в присутствии штамма 1 достоверно увеличился в 1,3 раза по сравнению с контролем, штамма 2 — в 1,7 раза, штамма 3 — в 1,4 раза, штамма 4 — в 1,5 раза, штамма 6, 8 и смеси штаммов 7-8 — в 1,8 раза, штамма 7 — в 1,6 раза, смеси штаммов 1-8 — в 2,5 раза по сравнению с контролем (таблица 1).

Анализ жизнеспособности растений сорта Denisa blue указывает на то, что в присутствии каждого вида штамма 1,2,3,4,7,8, а также смеси 7-8 штаммов показатели были на уровне контрольных, а в присутствии штаммов 5 и 6 даже немного ниже контроля. Достоверное увеличение жизнеспособности растений в 1,2 раза по сравнению с контролем при Р

Для сорта Reka анализ жизнеспособности растений также показывает, что показатели находились на уровне контрольных у всех штаммов и их смесей, за исключением штамма 8, применение которого при инокуляции достоверно увеличивает показатель жизнеспособности в 1,1 раза при Р

Двухфакторный дисперсионный анализ выявил достоверно влияние всех факторов и их комбинаций на изменчивость всех исследуемых признаков, кроме количества листьев и жизнеспособности растений. По этим двум признакам не было выявлено достоверное влияние фактора (таблица 2).

Выводы. Впервые изучен видовой (родовой) состав микоризы растений семейства вересковых

— черники обыкновенной, произрастающей в лесах Пинского района Брестской области, голубики высокорослой, интродуцированного вида, произрастающей на экспериментально-опытном участке биотехнологического факультета ПолесГУ. Наиболее встречаемыми среди обнаруженных грибов оказались представители рода Alternaría, обширно представлен также род Penicillium. Они выявлены в образцах как корневой системы черники, так и голубики. Представители рода Sporotrichum, вид Sporotrichum aureum, рода Coremium, вид Coremiopsis rosea, рода Monilia, вид Monilia humicola, рода Rhizophagus, вид Rhizophagus irregularis, рода Mortierella, вид Mortierella sp., род Oidiodendron были обнаружены исключительно в образцах корневой системы голубики.

Характерным для образцов корневой системы черники является наличие грибов из рода Cylindrocladium, вид Cylindrocladium sporarium, рода Pachybasium, вид Pachybasium hamatum, а также родов Rhinocephalum, Rhinocephalum, Spicaria, Fusarium. Наряду с эндомикоризными грибами выявлены следующие сопутствующие им микроорганизмы: бактерии родов

Desulfitobacterium, Escherichia coli, Acetobacter, Bacillus, Methylobacterium, Azotobacter, дрожжи рода Hanseniaspora.

1. Аношенко, Б.Ю. Программы анализа и оптимизации селекционного процесса растений / Б.Ю. Аношенко // Генетика. — М.: Наука, 2004. — Т.30. — Приложение. — С. 8-9.

2. Боровиков, В.П. STATISTICA: Искусство анализа данных на компьютере / В.П. Боровиков. -СПб., 2001. — 650 с.

3. Булавко, Г.И. Развитие микоризы на корнях разных видов голубики в условиях торфяных месторождений, выведенных из эксплуатации / Г.И. Булавко, А.П. Яковлев/ Актуальные проблемы сохранения и изучения фито- и микобиоты // Минск, — 2013. — С.348-350.

4. Звягинцев, Д.Г. Методы почвенной микробиологии и биохимии / Д.Г. Звягинцев — М.: МГУ. 1991. -302 с.

i Не можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.

5. Значение консортивных связей в организации биогеоценозов: грибы, образующие везику-лярно-арбускулярные эндомикоризы и методы их изучения: материалы II Всес. совещ. по проблеме изучения консорций, Пермь, 4-8 февраля 1975 г. / Л.В. Крюгер, И.А. Селиванов — Пермь: Звезда, — 1976. — 114 с.

6. Кириленко, Т.С. Атлас родов почвенных грибов (Ascomycetes и Fungi imperfecti) / Т.С. Кириленко. — Киев : Наука думка, 2007. — 128 с.

7. Коваль, Э.3. Выделение, идентификация, культивирование, хранение и селекция культур грибов — агентов коррозии кремнийсодержащих соединений/ Э.3. Коваль, Л.П. Сидоренко / Методы выделения и идентификации почвенных микромнцетов-биодеструкторов. Вильнюс, 2002. -С. 68 — 71.

8. Космачевская, Л.Н. Арбускулярно-везикулярная микориза: ее изучение и применение для повышения плодородия почв/ Л.Н. Космачевская // Агрохимия — 2013. — №2 — С. 23- 25.

9. Литвинов, М.А. Методы изучения почвенных микроскопических грибов/ М.А. Литвинов. -Л.: Наука, 2009. — 121 с.

10. Литвинов, М.А. Определитель микроскопических почвенных грибов/ М.А. Литвинов. — Л.. Наука, 2009. — 303 с.

11. Муромцев, Г.С. Почвенная микрофлора и фосфорное питание растений / Г.С. Муромцев, Г.Н. Маршунова, В.Ф. Павлова // Журн. Всесоюзного хим. общ-ва им. Д.И. Менделеева. — 1983. -Т. 28. — С. 22-27.

12. Определитель бактерий Берджи / Дж. Хоулт [и др.]; под ред. Дж. Хоулт. — М.: Мир, 1997. -100-105 с.

13. Пидопличко, Я.М. Пенициллин (ключ для определения видов)/ Я.М. Пидопличко. — Киев : Наука думка, 2002. — 150 с.

14. Пидопличко, Я.М. Атлас мукоральных грибов/ Я.М. Пидопличко, А.А. Милько. — Киев : Наука думка, 2001. — 115 с.

15. Соколова, Н.А. Эффективность искусственной микоризации местными эндомикоризными грибами на обыкновенном черноземе / Н.А. Соколова // Тез. Всесоюз. школы-конф. молодых ученых. Экологические проблемы в почвоведении и земледелии. — Курск, 2001. — С. 16-17

16. Элланская, И.А. Методы выделения и идентификации видов рода Fusarium Lk. ex Fr./Методы выделения и идентификации почвенных микромицетов-биодеструкторов / И.А. Эл-

ланская. — Вильнюс, 2002. — С. 125 -128.

17. Agerer, R. Colour Atlas of Ectommycorrhizae / R. Agerer — Einhorn Verlag Schwabisch Gmund -1996-2008. — V 1. — VI.

18. Miller, R.L. Survey of vesicular-arbuscular mycorrhizae in lettuce production in relation to management and soil factors / R.L. Miller/ Journal of Agricultural Science, Cambridge. — 2008. — Vol. 130. — P. 173-182.

19. Rickerl, D.H. Vesicularar buscular endomycorrhizal colonization of wetland plants/ D.H. Rickerl / Journal of Environmental Quality. — 2013.- Р. 113-116.

KAMELCHUK Yana S. VOLOTOVICH Anton A.

ANALYSIS OF VARIABILITY OF GROWTH INDICATORS AND DEVELOPMENT OF VARIETY BLUEBERRY PLANTS HIGHLY INOCULATED BY MICROIZING FUNGULAR MUSHROOMS IN EX-VITRO CONDITIONS

At reproduction in vitro, the acclimatization stage is considered critical and mass death of plants occurs, and therefore the use of mycorrhizal fungi in microclonal reproduction will help to increase the survival of plants in ex vitro conditions and is a promising method for plant adaptation. The article presents studies on the species composition of mycorrhizal fungi in blueberry and blueberry and their application in the stage of plant adaptation.

Keywords: microclonal reproduction, mycorrhiza, mycorrhiza-forming fungi, inoculation, ex vitro, adaptation

1. Anoshenko B.Yu. Programmy analiza i optimizatsii selektsionnogo protsessa rastenii [Programs for the analysis and optimization of plant breeding]. Genetika [Genetika]. Moscow, 2004, vol. 30, pp. 8-9 (In Russian)

2. Borovikov V.P. STATISTICA: Iskusstvo analiza dannykh na komp’yutere [STATISTICA: The art of analyzing data on a computer]. Saint Petersburg, 2001, 650 p. (In Russian)

3. Bulavko G.I., Yakovlev A.P. Razvitie mikorizy na kornyakh raznykh vidov golubiki v usloviyakh torfyanykh mestorozhdenii, vyvedennykh iz ekspluatatsii [The development of mycorrhizas on the roots of various species of blueberry in peat deposits, decommissioned]. Materialy nauchno-prakticheskoi konferentsii [Actual problems of preservation and study of phyto- and mycobiota]. Minsk, 2013, pp .348350 (In Russian)

4. Zvyagintsev D.G. Metody pochvennoi mikrobiologii i biokhimii [Methods of soil microbiology and biochemistry]. Moscow, Moscow State University, 1991, 302 p. (In Russian)

5. Kryuger L.V., Selivanov I.A. Znachenie konsortivnykh svyazei v organizatsii biogeotsenozov: griby, obrazuyushchie vezikulyarno-arbuskulyarnye endomikorizy i metody ikh izucheniya [Importance of consortium connections in the organization of biogeocenoses: fungi, forming vesicular-arbuscular endomycorrhizas and methods for their study]. Materialy II Vsesoyuznogo soveshchaniya po probleme izucheniya konsortsii [Materials of the Second Union Conference on the Study of Consortium]. Permian, 1976, 114 p. (In Russian)

6. Kirilenko T.S. Atlas rodovpochvennykh gribov (Ascomycetes i Fungi imperfecti) [Atlas of genera of soil fungi (Ascomycetes and Fungi imperfecti)]. Kiev, Nauka dumka Publ., 2007. 128 p. (In Russian)

7. Koval’ E.3., Sidorenko L.P. Vydelenie, identifikatsiya, kul’tivirovanie, khranenie i selektsiya kul’tur gribov — agentov korrozii kremniisoderzhashchikh soedinenii [Isolation, identification, cultivation, storage and selection of cultures of fungi — agents of corrosion of silicon-containing compounds]. Materialy nauchno-prakticheskoi konferentsii [Methods for isolating and identifying soil micromagnets-biodestructors]. Vilnius, 2002, pp. 68-71 (In Russian)

8. Kosmachevskaya L.N. Arbuskulyarno-vezikulyarnaya mikoriza: ee izuchenie i primenenie dlya povysheniya plodorodiya pochv [Arbuscular-vesicular mycorrhiza: its study and application for increasing soil fertility]. Agrokhimiya [Agrochemistry]. Moscow, Moscow State University 2013, no. 2,

pp. 23- 25 (In Russian)

9. Litvinov M.A. Metody izucheniya pochvennykh mikroskopicheskikh [Methods for studying soil microscopic fungi]. Leningrad, Nauka Publ., 2009, 121 p. (In Russian)

10. Litvinov M.A. Opredelitel’ mikroskopicheskikh pochvennykh gribov [Determinant of microscopic soil fungi]. Leningrad, Nauka Publ., 2009, 303 p. (In Russian)

11. Muromtsev G.S., Marshunova G.N., Pavlova V.F. Pochvennaya mikroflora i fosfornoe pitanie rastenii [Soil microflora and phosphoric nutrition of plants] Vsesoyuznoe khimicheskoe obshchestvo imeni D.I. Mendeleeva [All-Union Chemical Society named after D.I. Mendeleyev’s] Moscow, 1983, vol. 28, pp. 22-27 (In Russian)

12. Khoult Dzh. Opredelitel’ bakterii Berdzhi [The Berje’s bacteria determinant. Moscow, Mir Publ., 1997, 1430 p. (In Russian)

13. Pidoplichko Ya.M. Penitsillin (klyuch dlya opredeleniya vidov) [Penicillin (key for species identification)]. Kiev, Nauka dumka Publ., 2002, 150 p. (In Russian)

14. Pidoplichko Ya.M., Mil’ko A.A. Atlas mukoral’nykh gribov [Atlas of mucoral fungi]. Kiev, Nauka dumka Publ., 2001,115 p. (In Russian)

15. Sokolova N.A. Effektivnost’ iskusstvennoi mikorizatsii mestnymi endomikoriznymi gribami na obyknovennom chernozeme [Effectiveness of artificial mycorrhiza by local endomycorrhizal fungi on ordinary chernozem]. Materialy Vsesoyuznoi shkoly-konferentsii molodykh uchenykh «Ekologicheskie problemy v pochvovedenii i zemledelii» [Materials of the All-Union School-Conference of Young Scientists «Ecological problems in soil science and agriculture»]. Kursk, 2001, pp. 16-17 (In Russian)

16. Ellanskaya, I.A. Metody vydeleniya i identifikatsii vidov roda Fusarium Lk. ex Fr. [Methods for isolating and identifying species of the genus Fusarium Lk. ex Fr.]. Materialy nauchno-prakticheskoi konferentsii [Methods for isolating and identifying soil micromagnets-biodestructors]. Vilnius, 2002, pp. 125-128 (In Russian)

17. Agerer R. Colour Atlas of Ectommycorrhizae. Einhorn Verlag Schwabisch Gmund, 1996-2008, vol. I-VI.

18. Miller R.L. Survey of vesicular-arbuscular mycorrhizae in lettuce production in relation to management and soil factors. Journal of Agricultural Science, Cambridge, 2008, vol. 130, pp. 173-182.

19. Rickerl D.H. Vesicularar buscular endomycorrhizal colonization of wetland plants. Journal of Environmental Quality, 2013, pp. 113-116.

Преимущества использования микоризных грибов при посадке растений

Многие опытные садоводы слышали о симбиозе корневой системы растений с особыми грибами — микоризными. В основном, микориза упоминается в рекомендациях по выращиванию растений-любителей кислой почвы, например, голубики и хвойных. В последнее время препараты микоризы стали мне все чаще попадаться на глаза в садовых магазинах, и я решила изучить вопрос подробнее. Как оказалось, микориза чрезвычайно полезна не только для голубики и всевозможных «ёлок». Она представляет интерес практически для всех садоводов, ведь приносит пользу даже для плодовых деревьев. В этой статье расскажу, что такое микоризные грибы, и как они влияют на корневую систему культурных растений.

Преимущества использования микоризных грибов при посадке растений

Что такое микориза?

По данным ученых, микоризные грибы возникли, как минимум, 460 миллионов лет назад и сыграли ключевую роль в эволюции растительной жизни. Однако растениеводы только последние 20 лет начали понимать, насколько важную роль эти грибы играют в развитии растений. Тогда же были предприняты первые попытки использования микоризы для увеличения урожая и повышения жизнеспособности растений.

Слово «микориза» образовано путем соединения двух слов: ‘myco’ («гриб») и «риза» («корень»). Таким образом название отражает суть этого организма – осуществление связи между грибом и корнем. Грибы, которые формируют эти отношения, называют микоризные грибы или грибы-микоризообразователи.

Взаимодействие грибов и корневой системы растений является симбиозом. В результате такого взаимовыгодного сотрудничества микоризные грибы получают от растения углерод, необходимый для развития и роста гриба, а в обмен обеспечивают поступление из почвы в корень растения влаги и питательных веществ.

Специалисты считают, что более 80% видов высших растений способны образовать симбиоз с микоризой, включая все фруктовые деревья и кустарники, которые мы выращиваем в наших садах. Также существуют определенные виды растений, которым без микоризных грибов просто не выжить.

Если рассматривать микоризные грибы среди лесных съедобных, то нужно отметить, что большинство из них «специализируется» на каких-то конкретных деревьях. Так, масленок лиственничный образовывает микоризу только с лиственницей. А белый гриб в одних регионах может «сожительствовать» с дубом, березой, сосной и елью (например, в Санкт-Петербурге и области), а на юге — с грабом и буком. Подосиновик, рыжик, подберезовик, лисичка —также примеры микоризных грибов.

Грибы-микоризообразователи состоят из длинных тонких гиф, которые вступают в контакт с клетками корневой системы растения и затем распространяются в окружающей почве в поисках питательных веществ и воды.

Среди микоризных грибов самые распространённые:

Белый гриб в одних регионах может «сожительствовать» с дубом, березой, сосной и елью, а в других — с грабом и буком

Эндомикоризные грибы – гифы грибов такого типа фактически врастают в клетки корневой системы растений. Этот тип микоризных грибов невозможно увидеть без увеличения под микроскопом, так как их основная часть находится внутри корня, а на поверхности присутствие гриба выражено слабо. Эндомикоризные грибы вступают в симбиоз практически со всеми видами растений — от самых крошечных трав до исполинских деревьев, но в большинстве случаев имеют отношения с травянистыми растениями.
Эктомикоризные грибы – такой тип грибов разрастается на внешней стороне корней, образуя оболочку, которая может выглядеть как чехол или так называемые «микоризные трубки». Распространяются гифы по межклетникам, не проникая при этом в сами клетки. Эктомикоризные грибы преимущественно вступают в симбиоз с определенными видами деревьев, такими как, например, сосна и береза. В этом случае на корнях растений не наблюдаются корневые волоски.

Преимущества микоризных грибов для культурных растений

Повышение питательности почвы

В первую очередь, гифы грибов-микоризообразователей распространяются в почве, предоставляя корневой системе значительно большую площадь для поглощения влаги и важнейших питательных веществ. Хотя корневая система многих растений может быть достаточно мощной, но гифы микоризы могут достигать сотен метров, являясь как бы продолжением корня.

Микориза интенсивно разлагает грубые органические вещества на простые элементы, делая их легкодоступными для питания растения. Грибы-симбионты обеспечивают растение такими питательными веществами как калий, азот, цинк и другие. А это означает, что садоводу потребуется вносить гораздо меньше удобрений при выращивании культур, находящихся в подобном симбиозе. Поливать такие растения также приходится реже, ведь значительно повышается их устойчивость к засухе благодаря микоризе, добывающей влагу с огромной глубины.

Что касается вопроса, можно ли подкармливать растения с подселенной микоризой, то подкормка минеральными удобрениями, в принципе, не запрещена. Но важно поддерживать их невысокую концентрацию в почве, так как это может навредить как растению, так и грибам.

Микориза хорошо показывает себя при совместном применении с гранулированными удобрениями пролонгированного действия, эффективно перерабатывая их в доступные для растения формы.

Естественно, что микориза успешно используется при органическом земледелии.

Защита растений от болезней и вредителей

Микоризные грибы, выделяющие определенные ферменты, создают физический барьер вокруг корневой системы растений, таким образом защищая их от болезнетворных микроорганизмов, насекомых-вредителей и мелких насекомых, питающихся корнями.

Грибы-микоризообразователи обладают существенными противомикробными и противогрибковыми свойствами, поэтому могут подавлять развитие корневой и плодовой гнили культурных растений, грибных инфекций (фузариоз, фитофтороз, парша) и других заболеваний. Они значительно повышают сопротивляемость культур паразитам и нематодам.

Кроме того, микоризные грибы способствуют восстановлению и улучшению почвы в целом. Это обусловлено тем, что они производят липкий белок гломалин. Данное вещество помогает уменьшить эрозию и стабилизирует текстуру почвы. Считается, что гломалин содержит более трети мирового углерода и при этом совершенно безвреден.

Развитие корневой системы с микоризой (справа) и без нее (слева)

Более высокие урожаи и лучшее качество плодов

Симбиоз с грибами-микоризообразователями способствует лучшей приживаемости растений. Под влиянием таких грибов активно развивается корневая система культур, укрепляется их иммунитет, заметно улучшаются вкусовые и эстетические характеристики ягод и плодов.

В Графстве Кент в Британии был проведен эксперимент. Искусственные грядки в виде мешков с грунтом, которые там часто используются для выращивания клубники и малины, не содержат естественной микобиоты. Исследование показало, что грядки-мешки с клубничными кустами, обработанные грибами микоризы, показали статистически значительно более высокий урожай и более крупные плоды, чем те растения, которые выращивались без применения микоризы.

Обмен питательными веществами между растениями

Грибы-микоризообразовати имеют еще одну уникальную способностью, они образуют под землей коммуникационные сети, ведь переплетаясь гифы могут создавать симбиоз с несколькими растениями одновременно. В результате этого они становятся проводниками между растениями и артериями для обмена питательными веществами. При этом большинство штаммов микоризных грибов не производят плодовых тел, что было бы совершенно излишним в данном контексте использования гриба.

Картофель без микоризы и с ней

Какие бывают микоризные препараты?

Как было упомянуто выше, все фруктовые деревья и кустарники, а также овощные культуры, которые мы выращиваем у себя на участке, способны образовывать симбиотические отношения с микоризными грибами. Грибы-микоризообразователи встречаются в почве естественным образом, однако регулярное использование химических веществ (большого количества минеральных удобрений, гербицидов, инсектицидов и т.д.) истощают популяции микоризы. Поэтому целесообразно дополнительно вносить микоризу в грунт.

Сегодня в продаже имеется множество мико-препаратов западного и отечественного производства на основе микоризных грибов. Чаще всего микориза поступает в продажу в виде порошка или гранул, которые вносятся в почву во время посадки растений. Благодаря особой технологии, при соприкосновении с корнями грибы заселяют корневую систему растения всего за две недели, в то время как при наличии микоризы в почве в естественных условиях этот процесс может растянутся на годы.

Другая форма мико-препаратов – жидкость (расфасованный во флаконы готовый раствор). У такой формы существуют свои плюсы и минусы. С одной стороны эффект от их применения проявляется быстрее (порошку и гранулам потребуется некоторое время для активации жизнедеятельности спор), но вместе с тем срок годности жидкого препарата более ограничен, по сравнению с сухими формами.

Мико-препараты бывают разными по составу и могут содержать только один штамм или несколько различных штаммов микоризы. Также производители к ним нередко добавляют полезные бактерии (Bacillus subtilis, licheniformis, azotoformans, megaterium и другие), споры ризосферы Bacillus, муку из морских водорослей и гуминовые кислоты.

Как использовать микоризу?

Посадка растений с закрытой корневой системой

При высадке саженцев с комом земли, например, при пересадке и высадке контейнерных растений на постоянное место нужно просто внести гранулы в посадочную лунку и засыпать почвой, как при обычном внесении гранулированных удобрений. Обычно на одно растение требуется 5 грамм (чайная ложка) порошка микоризы, но лучше перед применением свериться с инструкцией к конкретному препарату.

Чаще всего микориза поступает в продажу в виде порошка или гранул, которые вносятся в почву во время посадки растений

Посадка растений с открытой корневой системой

При посадке деревьев, кустарников или саженцев клубники с голыми корнями (открытой корневой системой) лучше хорошо увлажнить корни, обмакнув их в воду, после чего окунуть в емкость с гранулами непосредственно перед посадкой.

Иногда в продаже встречаются так называемая «профессиональная микориза», где в наборе идет специальное саше с гелем. В таком случае необходимо смешать гель с водой до образования однородной пасты (наподобие эмульсии), замешать гранулы с гелем и окунуть корни растения. Данный вариант обеспечивает максимальный контакт между корнями и микоризными грибами.

В контейнерном садоводстве

При контейнерном выращивании растений микориза замешивается с субстратом. Микопрепараты могут использоваться в любых субстратах: земля, торф, кокосовое волокно, минеральная вата и гидропоника. При применении микоризы в контейнерном садоводстве важно соблюдать несколько условий в целях эффективной колонизации субстрата грибами:

субстрат должен быть постоянно влажным в течение первый двух недель с момента внесения препарата, то есть его необходимо регулярно увлажнять; после истечения этого срока полив должен быть регулярным, по мере необходимости, но главное — не допускать полного пересыхания грунта;
при использовании микоризы нельзя вносить в субстрат противогрибковые препараты;
для ускоренной и успешной колонизации рекомендуется подкармливать микоризу углеводами, что обеспечит грибы питанием и ускорит их рост.

Микориза для ранее высаженных растений

Чтобы подселить микоризу к уже растущим на вашем участке растениям, необходимо приобрести препарат микоризы, предназначенный для приготовления рабочего раствора. После того как порошок будет разведен в отстоянной воде, нужно осуществить полив под корень. Обычно для лучшего эффекта процедуру повторяют один раз в две недели, либо один раз в месяц, желательно, чтобы таких поливов было не менее пяти раз за сезон.

Микориза для рассады

При использовании микоризы для рассады следует развести микопрепарат в отстоянной или не хлорированной воде и обильно полить грунт в рассадных емкостях примерно за 2-3 дня перед началом посева семян. В дальнейшем после пикировки рассады, распикированные сеянцы поливаются рабочим раствором микоризы. Если пикировок будет несколько, то растения проливаются раствором каждый раз.

Важно: для приготовления эмульсии или растворов с микоризой необходимо использовать только фильтрованную или дистиллированную воду. Соединения хлора в водопроводной воде подавляют развитие грибов. Если использовать фильтрованную или дистиллированную воду нет возможности, то нужно отстоять воду из крана, как минимум, в течение суток.

Рассылка Ботанички

Подпишитесь на нашу бесплатную e-mail рассылку. В еженедельных выпусках вас ожидают:

Лучшие новые материалы сайта
Популярные статьи и обсуждения
Интересные темы форума

Наш чат в Телеграм

Общение в реальном времени в нашем телеграм-чате. Поделитесь своими открытиями с новичками и профессионалами. Покажите фотографии своих растений. Задайте свои вопросы опытным садоводам!

Форум Ботанички

Появились вопросы? Задайте их на нашем форуме. Получите актуальные рекомендации и советы от других читателей и наших авторов. Делитесь своими успехами и неудачами. Выкладывайте фотографии неизвестных растений для опознания.

Социальные сети

Приглашаем вас в наши группы в социальных сетях. Комментируйте и делитесь полезными советами!

Лучшие публикации
Новые и интересные сорта
Красивые ландшафтные решения

Читайте больше на эту тему:

Сад и огород 2647
Цветник и ландшафт 2138
Овощи 907
Уход за садом 791
Плодовые деревья и кустарники 540
Декоративные кустарники 393
Органическое земледелие 176
Деревья 172
Хвойные 139
Грибы 43

Микориза для голубики какой тип грибов